Please use this identifier to cite or link to this item: http://rima110.im.ufrrj.br:8080/jspui/handle/20.500.14407/19859
Full metadata record
DC FieldValueLanguage
dc.contributor.authorSousa, Érica Barbosa de-
dc.date.accessioned2025-01-27T15:13:28Z-
dc.date.available2025-01-27T15:13:28Z-
dc.date.issued2023-03-02-
dc.identifier.citationSOUSA, Érica Barbosa de. Determinação espectrofotométrica de carbono orgânico total em solos com KMnO4, uma nova metodologia com ênfase na química verde. 2023. 102 f. Tese (Doutorado em Química) – Instituto de Química, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2023.pt_BR
dc.identifier.urihttps://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/19859-
dc.description.abstractA matéria orgânica do solo é de fundamental importância para diversas funções ambientais associadas ao seu processo de ciclagem. É estimada pelo teor de carbono orgânico total (COT) e desempenha um papel fundamental na retenção de nutrientes, agregação do solo, dinâmica da água e atua como fonte primária de energia para a atividade biológica. No Brasil, os métodos de oxidação úmida de Walkley e Black e de Yeomans e Bremner são os mais utilizados para determinar o COT. Estes métodos se baseiam na oxidação do carbono orgânico (CO) com dicromato de potássio (K2Cr2O7), em meio fortemente ácido e, posterior, titulação do dicromato remanescente. No entanto, existem várias desvantagens associadas a esses métodos, incluindo preocupações ambientais devido ao uso de dicromato de potássio, o alto custo de armazenamento e descarte de resíduos perigosos e a necessidade de utilizar grandes volumes de ácido sulfúrico concentrado, que é um reagente de compra controlada. Além disso, esses métodos de oxidação úmida não oxidam totalmente o CO. A análise elementar por combustão seca é a técnica de referência e mais confiável para determinar o COT, pois pode oxidar totalmente o CO. Entretanto, os custos para sua implantação e análise são elevados, inviabilizando seu uso em análises de rotina. Este trabalho propõe a quantificação do COT de solos utilizando KMnO4 como oxidante alternativo ao K2Cr2O7 e a posterior determinação espectrofotométrica do permanganato remanescente em λ=525 nm. A espectrofotometria ultravioleta-visível é uma técnica bem estabelecida e de baixo custo operacional, que permite resultados precisos e confiáveis. Inicialmente, o estudo da oxidação de CO foi conduzido utilizando biftalato de potássio como padrão de matéria orgânica e um planejamento fatorial 23 (2 níveis e 3 variáveis) para otimizar as condições de reação. Os fatores estudados foram tempo (30 e 60 minutos), temperatura (60 e 95 oC) e acidez (0,125 e 0,250 mol L-1 de H2SO4), sendo a temperatura o fator que mais influenciou a oxidação do CO. As condições ótimas de reação foram determinadas como 30 minutos, 95 oC e 0,125 mol L-1 de H2SO4. A oxidabilidade dos compostos orgânicos investigados pelo KMnO4 foi avaliada, obtendo-se resultados equiparáveis ao K2Cr2O7. Para a determinação espectrofotométrica do permanganato remanescente, foi investigada a influência do tamanho da amostra para quatro diferentes classes de solos, sendo 500 mg a massa ideal. Na análise de 16 amostras de solo, os teores de COT obtidos pelo método proposto correlacionaram fortemente com os obtidos pelo método Yeomans e Bremner (r = 0,966) e combustão seca (r = 0,975). Esta nova abordagem para determinar o TOC em solos pode substituir os métodos atualmente utilizados em laboratórios de solos, pois apresenta confiabilidade, simplicidade, baixo custo e oferece menos riscos ao analista e ao meio ambiente, em relação aos métodos com o dicromato de potássio.pt_BR
dc.description.sponsorshipCoordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPESpt_BR
dc.languageporpt_BR
dc.publisherUniversidade Federal Rural do Rio de Janeiropt_BR
dc.subjectCHNpt_BR
dc.subjectsolospt_BR
dc.subjectYeomans e Bremnerpt_BR
dc.subjectplanejamento fatorialpt_BR
dc.subjectsoilspt_BR
dc.subjectfactorial designpt_BR
dc.titleDeterminação espectrofotométrica de carbono orgânico total em solos com KMnO4, uma nova metodologia com ênfase na química verdept_BR
dc.title.alternativeSpectrophotometric determination of total organic carbon in soils with KMnO4, a new methodology with an emphasis on green chemistryen
dc.typeTesept_BR
dc.description.abstractOtherSoil organic matter is of fundamental importance for various environmental functions associated with its cycling process. It is estimated by the total organic carbon (TOC) content and plays a key role in nutrient retention, soil aggregation, water dynamics and acts as an energy source of energy for biological activity. In Brazil, the Walkley-Black and Yeomans-Bremner wet oxidation methods are the most used to determine TOC. These methods are based on the oxidation of organic carbon (CO) with potassium dichromate (K2Cr2O7), in a strongly acid medium and, subsequently, titration of the remaining dichromate. However, there are several disadvantages associated with these methods, including environmental concerns due to the use of potassium dichromate, the high cost of storing and disposing of hazardous waste, and requirement for large volumes of concentrated sulfuric acid, which is a controlled purchase reagent. Furthermore, these wet oxidation methods do not entirely oxidize CO. Dry combustion by elemental analysis is the reference and most reliable technique for determining the TOC, as it can fully oxidize CO. However, the costs for its implementation and analysis are high, making its use unfeasible in routine analyses. This work proposes the quantification of TOC in soil using KMnO4 as an alternative oxidant to K2Cr2O7 and the subsequent spectrophotometric determination of the remaining permanganate at λ=525 nm. Ultraviolet-visible spectrophotometry is a well-established technique with low operational cost, which allows accurate and reliable results. Initially, the OC oxidation study was conducted using potassium biphthalate as the organic matter standard and a 23 factorial design (2 levels and 3 variables) to optimize the reaction conditions. The factors studied were time (30 and 60 minutes), temperature (60 and 95 oC) and acidity (0.125 and 0.250 mol L-1 of H2SO4), with temperature being the factor that most influenced OC oxidation. The optimal reaction conditions were determined as 30 minutes, 95 oC and 0.125 mol L-1 of H2SO4. The oxidability of the investigated organic compounds by KMnO4 was evaluated, obtaining results comparable to K2Cr2O7. For the spectrophotometric determination of the remaining permanganate, the influence of sample size was investigated for four different soil classes, with 500 mg being identified as the ideal mass. In the analysis of 16 soil samples, the TOC contents obtained by the proposed method correlated strongly with those obtained by the Yeomans-Bremner method (r = 0.966) and dry combustion (r = 0.975). This new approach to determine the TOC in soils can replace the methods currently used in soil laboratories, since it presents reliability, simplicity, cost-effective and presents less risk to the analyst and to the environment, in relation to the methods with potassium dichromate.en
dc.contributor.advisor1Rocha Junior, Jose Geraldo-
dc.contributor.advisor1IDhttps://orcid.org/0000-0002-3115-6724pt_BR
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/7721155377063365pt_BR
dc.contributor.advisor-co1Lã, Otavio Raymundo-
dc.contributor.advisor-co1Latteshttp://lattes.cnpq.br/8264422167175735pt_BR
dc.contributor.referee1Rocha Junior, Jose Geraldo-
dc.contributor.referee1IDhttps://orcid.org/0000-0002-3115-6724pt_BR
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/7721155377063365pt_BR
dc.contributor.referee2Pereira, Marcos Gervasio-
dc.contributor.referee2IDhttps://orcid.org/0000-0002-1402-3612pt_BR
dc.contributor.referee2Latteshttp://lattes.cnpq.br/3657759682534978pt_BR
dc.contributor.referee3Barra, Cristina Maria-
dc.contributor.referee3IDhttps://orcid.org/0000-0003-0516-2562pt_BR
dc.contributor.referee3Latteshttp://lattes.cnpq.br/3429510646090195pt_BR
dc.contributor.referee4Silveira, Eva Lúcia Cardoso-
dc.contributor.referee4Latteshttp://lattes.cnpq.br/0627071962779588pt_BR
dc.contributor.referee5Caldas, Luiz Fernando Silva-
dc.contributor.referee5Latteshttp://lattes.cnpq.br/2872113209685121pt_BR
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/8433425421482097pt_BR
dc.publisher.countryBrasilpt_BR
dc.publisher.departmentInstituto de Químicapt_BR
dc.publisher.initialsUFRRJpt_BR
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Químicapt_BR
dc.relation.referencesAIKEN, G.; KAPLAN, L.; WEISHAA, J. Assessment of relative accuracy in the determination of organic matter concentrations in aquatic systems. Journal of environmental monitoring v. 4, n. 1, p. 70-74, 2002. ALLISON, L. E. Organic Carbon. In Methods of Soil Analysis, A.G. Norman (Ed.). 1965. Disponível em: https://doi.org/10.2134/agronmonogr9.2.c39. Acessado em: 08 set. 2022. ALLISON, L. E.; BOLLEN, W. B.; MOODIE, C. D. Total Carbon. In Methods of Soil Analysis, A.G. Norman (Ed.). 1965. Disponível em: https://doi.org/10.2134/agronmonogr9.2.c38. Acessado em: 08 set. 2022. AL-TAMRAH, S. A. Spectrophotometric determination of nicotine, Analytica Chimica Acta, v. 379, n. 1–2, p. 75-80, 1999. Disponível: https://doi.org/10.1016/S0003- 2670(98)00517-0. Acessado em: 10 jan. 2023. AMACHER, M. C.; HENDERSON, R. E.; BRUPBACHER, R. H.; SEDBERRY JUNIOR, J. E. Dichromate‐oxidizable and total organic carbon contents of representative soils of the major soil areas of Louisiana, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 17, n. 10, p. 1019-1032, 1986. DOI: 10.1080/00103628609367771. ANALYTICAL METHODS COMMITTEE. Evaluation of analytical instrumentation. Part XIX CHNS elemental analysers. Accreditation and Quality Assurance v. 11, p. 569– 576, 2006. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s00769-006-0185-x. Acesso em: 31 jan 2023. ANASTAS, P. T.; WARNER J. C. Green Chemistry: Theory and Practice, Oxford University Press, Oxford, 1998. ANGST, G.; MUELLER, K. E.; NIEROP, K. G. J.; SIMPSON, M. J. Plant- or microbial- derived? A review on the molecular composition of stabilized soil organic matter, Soil Biology and Biochemistry, v. 156, p. 108-189, 2021. ISSN 0038-0717. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2021.108189. Acessado em: 01 fev. 2023. ARGENTINA, Ministerio de Seguridad; Decreto Nacional N° 593/2019. Resolucion N° 1122/2019 de 27 de agosto de 2019. Manual de Procedimientos Administrativos. Reglamentacion de la Ley Nro 26.045 “del Registro Nacional de Precursores Quimicos”, Buenos Aires, Argentina, 2019. Disponível em: https://www.argentina.gob.ar/sites/default/files/renpremanual-procedimientos- administrativos-resolucion-1122-19.pdf. Acessado em: 01 out. 2022. ATSDR - AGENCY FOR TOXIC SUBSTANCES AND DISEASE REGISTRY. Toxicological Profile for Sulfur Trioxide and Sulfuric Acid. Atlanta, GA: U.S. Department of Health and Human Services, Public Health Service. 1998. ATSDR - AGENCY FOR TOXIC SUBSTANCES AND DISEASE REGISTRY Toxicological profile for Chromium. Atlanta, GA: U.S. Department of Health and Human Services, Public Health Service. 2012. ASSOCIAÇÃO BRASILEIRA DE NORMAS TÉCNICAS (ABNT). NBR 10.004, NBR 10.005, NBR 10.006, NBR 10.007 – Resíduos Sólidos: Coletânea de normas. 2.ed. Rio de Janeiro, 2004. 71p 75 BAHADORI, M.; TOFIGHI, H. A Modified Walkley-Black Method Based on Spectrophotometric Procedure, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 47, n. 2, p. 213-220, 2015. DOI:10.1080/00103624.2015.1118118. BAKR, N.; EL-ASHRY, S. M. Organic matter determination in arid region soils: loss- on-ignition versus wet oxidation, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 49, n. 20, p. 2587-2601, 2018. DOI: 10.1080/00103624.2018.1526947. BARROS NETO, B.; SCARMINIO, I. S.; BRUNS, R. E.; Como fazer experimentos,3rd ed., Unicamp: Campinas, 2007. BASAVAIAH, K.; RAJENDRAPRASAD, N. Spectrophotometric assay of pioglitazone hydrochloride using permanganate in acidic and basic media. Current Chemistry Letters, v. 7, n. 2, p. 45-56, 2018. BASAVAIAH, K.; THARPA, K.; KUMAR U. R. A, RAJEDRAPRASAD, N.; HIRIYANNA S. G.; VINAY K. B. Optimized and validated spectrophotometric methods for the determination of raloxifene in pharmaceuticals using permanganate. Archives of pharmacal research, v. 32, n. 9, p. 1271-1279, 2009. DOI: 10.1007/s12272-009-1913-7. BATJES, N. H.; SOMBROEK, W. G. Possibilities for carbon sequestration in tropical and subtropical soils, Global Change Biology, v. 3, p. 161-173, 1997. BERGAMIN FILHO, H.; KRUG, F. J.; ZAGATTO, E. A. G.; ROCHA, F. R. P. Espectrofotometria no ultravioleta e visível. Centro de Energia Nuclear na Agricultura, Universidade de São Paulo, 2010. 21p BHATTACHARYYA, T.; CHANDRAN, P.; RAY, S. K. ; MANDAL, C. ; TIWARY, P.; PAL, D. K.; MAURYA, U. K.; NIMKAR, A. M.; KUCHANKAR, H.; SHEIKH, S.; TELPANDE, B. A.; KOLHE, A. Walkley-Black Recovery Factor to Reassess Soil Organic Matter: Indo-Gangetic Plains and Black Soil Region of India Case Studies, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 46, n. 20, p. 2628-2648, 2015. DOI: 10.1080/00103624.2015.1089265. BISUTTI, I.; HILKE, I.; RAESSLER, M. Determination of total organic carbon – an overview of current methods,TrAC Trends in Analytical Chemistry, v. 23, n 10–11, p. 716-726, 2004. BLAIR, G. J.; LEFROY, R. D. B.; LISLE, L. Soil carbon fractions based on their degree of oxidation, and the development of a carbon management index for agricultural systems. Australian Journal of Agricultural Research, v. 46, p. 1459-1466, 1995. Disponível em: https://doi.org/10.1071/AR9951459. Acessado em 11 nov. 2022. BOT, A.; BENITES, J. The Importance of Soil Organic Matter: Key to Drought- resistant Soil and Sustained Food Production. Food and Agriculture Organization. 2005, 78p BRASIL, Ministério da Justiça e Segurança Pública Gabinete do Ministro; Portaria N° 240, de 12 de marco de 2019. Estabelece procedimentos para o controle e a fiscalização de produtos químicos e define os produtos químicos sujeitos a controle pela Polícia Federal, Diário Oficial da união (DOU), Brasília, Brasil, 2019. Disponível em:https://pesquisa.in.gov.br/imprensa/jsp/visualiza/index.jsp?data=14/03/2019&jornal =515&pagina=41. Acessado em 01 out. 2022. 76 BRASIL, J. L.; VAGHETTI, J. C. P.; SANTOS JR, B. R. A.; SIMON, N. M.; PAVAN, F. A.; DIAS, S. L. P.; LIMA, E. C. Planejamento estatístico de experimentos como uma ferramenta para otimização das condições de biossorção de Cu (II) em batelada utilizando-se casca de nozes pecã como biossorvente. Química Nova. v. 30, n. 2, p. 548- 553, 2007. BREMNER, J. M. Use of the Van Slyke-Neil manometric apparatus for the determination of organic and inorganic carbon in soil and of organic carbon in soil extracts. The Analyst, v. 74, n. 882, p. 492, 1949. Doi:10.1039/an9497400492. BRUNETTO, G.; MELO, G. W.; KAMINSKI, J.; FURLANETTO, V.; FIALHO, F. B. Avaliação do método de perda de peso por ignição na análise de matéria orgânica em solos da Serra Gaúcha do Rio Grande do Sul. Ciência Rural, v. 36, n. 6, 1936-1939, p. 425-430, 2006. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.aaspro.2015.03.048. Acessado em: 15 dez 2022. BURGOT, J. L.; Ionic Equilibria in Analytical Chemistry; Springer Science & Business Media: Germany, 2012. CARMO, D. L.; SILVA, C. A. Métodos de quantificação de carbono e matéria orgânica em resíduos orgânicos, Revista Brasileira de Ciência do Solo [online]. v. 36, n. 4, p. 1211- 1220, 2012, Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0100-06832012000400015, Acesso em 17 out. 2022. CHATTERJEE, A.; LAL, R.; WIELOPOLSKI, L.; MARTIN, M. Z.; EBINGER, M. H. Evaluation of Different Soil Carbon Determination Methods, Critical Reviews in Plant Sciences, v. 28, n. 3, p. 164-178, 2009. CHENU, C.; RUMPEL, C.; LEHMANN, J. Chapter 13 - Methods for Studying Soil Organic Matter: Nature, Dynamics, Spatial Accessibility, and Interactions with Minerals, Editor(s): Eldor A. Paul, Soil Microbiology, Ecology and Biochemistry (Fourth Edition), Academic Press, p. 383-419, 2015. ISBN 9780124159556, Disponível em: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-415955-6.00013-X. Acesso em 31 ago. 2022. CHILE; Decreto Supremo N° 1.358, 17 de abril de 2007, Establece normas que regulan las medidas de control de precursores y sustâncias químicas esenciales; Ministerio del Interior, Santiago, Chile, 2007. Disponível em: https://www.bcn.cl/leychile/navegar?idNorma=260089. Acessado em: 01 out. 2022. COMMISSION OF THE EUROPEAN COMMUNITIES. 2019/1148/EU: Commission Decision of 11 July 2019; Official Journal of the European Union, 2019, L l86, p.1. Disponível em: https://eur- lex.europa.eu/legalcontent/EN/TXT/?uri=OJ:L:2019:186:TOC. Acessado em: 01 out. 2022. CONSELHO NACIONAL DO MEIO AMBIENTE (CONAMA). Resolução CONAMA No 430, de 13/05/2011, que dispõe sobre as condições e padrões de lançamento de efluentes. 2011. CULMAN, S. W.; SNAPP, S. S.; FREEMAN, M. A.; SCHIPANSKI, M. E.; BENISTON, J.; LAL, R.; DRINKWATER, L. E.; FRANZLUEBBERS, A. J.; GLOVER, J. D.; GRANDY, A. S.; LEE, J.; SIX, J.; MAUL, J. E.; MIRSKY, S. B.; SPARGO, J. T.; WANDER, M. M. Permanganate oxidizable carbon reflects a processed soil fraction that 77 is sensitive to management, Soil Science Society of America Journal, v. 76, p. 494-504, 2012. Disponível em: https://doi.org/10.2136/sssaj2011.0286. Acessado em 19 ago. 2022. CULMAN, S. W.; SNAPP, S. S.; GREEN, J. M.; GENTRY, L. E. Short- and Long-Term Labile Soil Carbon and Nitrogen Dynamics Reflect Management and Predict Corn Agronomic Performance. Agronomy Journal, v.105, p. 493-502, 2013. Disponível em: https://doi.org/10.2134/agronj2012.0382. Acessado em: 19 ago. 2022. DEGTJAREFF, W. T. Determining soil organic matter by means of hydrogen peroxide and chromic acid, Soil Science, v. 29, p. 239-245, 1930. DENG, Y.; DIXON, J. B. Soil Organic Matter and Organic-Mineral Interactions. In Soil Mineralogy with Environmental Applications (eds J.B. Dixon and D.G. Schulze). 2002. Disponível em: https://doi.org/10.2136/sssabookser7.c3. Acessado em: 17 ago. 2022. DEVI, O. Z., BASAVAIAH, K.; VINAY, K. B. Application of potassium permanganate to spectrophotometric assay of metoclopramide hydrochloride in pharmaceuticals. Journal Applied Spectroscopy, v. 78, p. 873-883, 2012. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s10812-012-9547-9. Acessado em: 05 out. 2022. DHILLON, G. S.; AMICHEV, B. Y.; FREITAS, R.; REES, K. V. Accurate and Precise Measurement of Organic Carbon Content in Carbonate Rich Soils, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 46, n. 21, p. 2707-2720, 2015. DOI: 10.1080/00103624.2015.1089271. DIAS, R. S.; ABREU, C. A.; ABREU, M. F.; PAZ-FERREIRO, V.; MATSURA, E. E.; GONZÁLEZ, A. P. Comparison of Methods to Quantify Organic Carbon in Soil Samples from São Paulo State, Brazil, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 44, n. 1-4, p. 429-439, 2013. DOI: 10.1080/00103624.2013.742345. DÍAZ‐ZORITA, M. Soil organic carbon recovery by the Walkley‐Black method in a typic hapludoll, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 30, n. 5-6, p. 739–745, 1999. DOI:10.1080/00103629909370242. DIEDERICH, K. M.; RUARK, M. D.; KRISHNAN, K.; ARRIAGA, F. J.; SILVA, E. M. Increasing labile soil carbon and nitrogen fractions require a change in system, rather than practice. Soil Science Society of America Journal, v. 83, p. 1733-1745, 2019. Disponível em: https://doi.org/10.2136/sssaj2018.11.0458. Acessado em: 19 ago. 2022. DORAN, J. W.; PARKIN, T. B. Defining and Assessing Soil Quality. In Defining Soil Quality for a Sustainable Environment (eds J.W. Doran, D.C. Coleman, D.F. Bezdicek and B.A. Stewart 1994. DOI:10.2136/sssaspecpub35.c1. DORAN, J. W.; JONES, A. J.; SIKORA, L. J.; STOTT, D. E. Soil Organic Carbon and Nitrogen. SSSA Special Publication. 1996. DOI:10.2136/sssaspecpub49.c9. DUQUE, C.C. Determinação de carbono em amostras de solos do estado de são paulo por espectroscopia no infravermelho próximo, Instituto Agronômico, Campinas, 2018, 77p EMBRAPA. Manual de métodos de análise de solo. 3a edição revista e ampliada, Brasília, DF, 2017. 78 ENANG, R. K.; YERIMA, B. P. K.; KOME, G. K.; VAN RANST, E. Assessing the Effectiveness of the Walkley-Black Method for Soil Organic Carbon Determination in Tephra Soils of Cameroon, Communications in Soil Science and Plant Analysis, p. 1–8, 2018. DOI:10.1080/00103624.2018.151094. ESCOSTEGUY, P. A. V.; GALLIASSI, K.; CERETTA, C. A. Determinação de matéria orgânica do solo pela perda de massa por ignição, em amostras do Rio Grande do Sul, Revista Brasileira de Ciências do Solo, v. 31, n. 2, p. 247-255, 2007. FAO - FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION OF THE UNITED NATIONS. Measuring and modelling soil carbon stocks and stock changes in livestock production systems: Guidelines for assessment (Version 1). Livestock Environmental Assessment and Performance (LEAP) Partnership. Rome, FAO. 170 pp. License: CC BY- NC-SA 3.0 IGO. 2019 FERNANDES, R. B. A.; CARVALHO JUNIOR, I. A.; RIBEIRO JUNIOR, E. S.; MENDONÇA, E.S. Comparison of different methods for the determination of total organic carbon and humic substances in Brazilian soils. Revista Ceres [online]. v. 62, n. 5, p. 496-501, 2015. Disponível em: <https://doi.org/10.1590/0034- 737X201562050011>. Accessado em: 22 set. 2022. FERREIRA, E. C.; MILORIT, D. M. B. P.; FERREIRA, E. J.; NETO, L. Utilização de espectroscopia de emissão óptica com plasma induzido por laser (libs) e rede neural artificial para determinação de carbono em solos In: ENCONTRO BRASILEIRO DE SUBSTÂNCIAS HÚMICAS, v. 8, Pelotas, RS. Matéria orgânica ambiental e sustentabilidade: livro de resumos. Pelotas, RS: Embrapa Clima Temperado, 2009. 95p FLIEßBACH, A.; OBERHOLZER, H.; GUNST, L.; MÄDER, P. Soil organic matter and biological soil quality indicators after 21 years of organic and conventional farming, Agriculture, Ecosystems & Environment, v. 118, n. 1-4, p. 273-284, 2007. ISSN 0167- 8809. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.agee.2006.05.022. Acessado em 06 mai. 2022. FRANKS, C. D.; KIMBLE, J. M.; SAMSON-LIEBIG, S. E.; SOBECKI, T. M. Organic carbon methods, microbial biomass, root biomass, and sampling design under development. Natural Resources Conservations Reprinted from Assessment Methods for Soil Science, Capítulo 8. Lewis Publishers, Washington, D.C. 2001. GALO, A. L.; COLOMBO, M. F. Espectrofotometria de longo caminho óptico em espectrofotômetro de duplo-feixe convencional: uma alternativa simples para investigações de amostras com densidade óptica muito baixa. Química Nova, v. 32, n. 2, 2009. GANESH, S.; KHAN, F.; AHMED, M.; VELAVENDAN, P.; PANDEY, N.; MUDALI, U. Developed New Procedure for Low Concentrations of Hydrazine Determination by Spectrophotometry: Hydrazine-Potassium Permanganate System, Journal of Analytical Sciences, Methods and Instrumentation, v. 2, n. 2, p. 98-102, 2012. Doi: 10.4236/jasmi.2012.22018. GATTO, A.; BARROS, N. F.; NOVAIS, R. F.; SILVA, I. R.; MENDONÇA, E. S.: VILLANI, E. M. A. Comparação de métodos de determinação do carbono orgânico em 79 solos cultivados com eucalipto. Revista Brasileira de Ciência do Solo, v. 33, n. 3, 2009. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0100-06832009000300026. Acessado em: 27 jul. 2019. GERAEI, D. S.; HOJATI, S.; LANDI, A.; CANO, A. F.; Total and labile forms of soil organic carbon as affected by land use change in southwestern Iran, Geoderma Regional, v. 7, n. 1, p. 29-37, 2016. ISSN 2352-0094. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.geodrs.2016.01.001. Acessado em: 19 ago. 2022. GESSESSE, T. A; KHAMZINA, A. How reliable is the Walkley-Black method for analyzing carbon-poor, semi-arid soils in Ethiopia? Journal of Arid Environments, v. 153, p. 98-101, 2018. GILLMAN, G. P.; SINCLAIR, D. F.; BEECH, T. A. (1986). Recovery of organic carbon by the Walkley and Black procedure in highly weathered soils. Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 17, n. 8, p. 885–892, 1986. Doi:10.1080/00103628609367759. GOMES, M. F.; VASCONCELOS, S. S.; VIANA-JUNIOR, A. B.; COSTA, A. N. M.; BARROS, P. C.; RYOHEI KATO, O.; CASTELLANI, D. C. Oil palm agroforestry shows higher soil permanganate oxidizable carbon than monoculture plantations in Eastern Amazonia. Land Degradation & Development, v. 32, n. 15, p. 4313-4326, 2021. Disponível em: https://doi.org/10.1002/ldr.4038. Acessado em: 19 ago. 2022. GONZÁLEZ-PÉREZ, J. A.; GONZÁLEZ-VILA, F. J.; ALMENDROS, G.; KNICKER, H.; The effect of fire on soil organic matter—a review, Environment International, v. 30, n. 6, p. 855-870, 2006. ISSN 0160-4120. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.envint.2004.02.003. Acessado em 06 mai. 2022. GOUDA, A. A.; EL-SHEIKH, R.; EL SHAFEY, Z.; HOSSNY, N.; EL-AZZAZY, R. Spectrophotometric Determination of Pipazethate HCl and Dextromethorphan HBr using Potassium Permanganate, International Journal Biomedic Science, v. 4, n. 4, p. 294-302, 2008. GREWAL, K. S.; BUCHAN, G. D.; SHERLOCK, R. R. A comparison of three methods of organic carbon determination in some New Zealand soils. Journal of Soil Science, v. 42, p. 251-257, 1991. HARDY, B.; DUFEY, J. E. The resistance of centennial soil charcoal to the “Walkley- Black” oxidation, Geoderma, v. 303, p. 37-43, 2017. ISSN 0016-7061. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.geoderma.2017.05.001. Acessado em: 18 ago. 2022. HAYNES, R. J. Labile Organic Matter Fractions as Central Components of the Quality of Agricultural Soils: An Overview, Advances in Agronomy, p. 221–268, 2005. DOI:10.1016/s0065-2113(04)85005-3. HEANES, D. L. Determination of Total Organic-C in soils by an improved chromic acid digestion and spectrophotometric procedure. Journal Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 15, p. 1191-1213, 1984. Disponível em: https://doi.org/10.1080/00103628409367551. Acessado em: 24 jun. 2019. HOYLE, F. Managing Soil Organic Matter: A Practical Guide. Grains Research and Development Corporation, 2013. Disponível em: <https://grdc.com.au/resources-and- 80 publications/all-publications/publications/2013/07/grdc-guide- managingsoilorganicmatter. Acessado em: 27 ago. 2022. IARC - INTERNATIONAL AGENCY FOR RESEARCH ON CANCER. Chromium, nickel and welding. IARC monographs on the evaluation of carcinogenic risks to humans, World Health Organization, IARC, France, Vol. 49, 1990. JAMOVI. (Version 2.2) THE JAMOVI PROJECT (2021). [Computer Software]. Disponível em: https://www.jamovi.org. JIMENEZ, R. R.; LADHA, J. K. Automated elemental analysis: A rapid and reliable but expensive measurement of total carbon and nitrogen in plant and soil samples, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 24, n. 15-16, p. 1897- 1924, 1993. DOI: 10.1080/00103629309368926. JOHNS, T. J.; ANGOVE, M. J.; WILKENS, S. Measuring soil organic carbon: which technique and where to from here? Soil Research, v. 53, n. 7, p. 717, 2015. Disponível em: https://link.gale.com/apps/doc/A437395023/AONE?u=capes&sid=bookmark- AONE&xid=05047a5e. Acessado em 16 set. 2022. JOHNSTON, A. E.; POULTON, P. R.; COLEMAN, K. Soil Organic Matter: Its Importance in Sustainable Agriculture and Carbon Dioxide Fluxes, Advances in Agronomy, v. 101, p. 1-57, 2009. KALBUS, G. E.; LIEU, V. T.; KALBUS, L. H. 100 A Spectrophotometric Study of the Permanganate–Oxalate Reaction: An Analytical Laboratory Experiment. Journal of Chemical Education, v. 81, n. 1, p. 100-102, 2004. DOI: 10.1021/ed081p100 KAMARA, A.; RHODES, E. R.; SAWYERR, P. A. Dry combustion carbon, Walkley– Black carbon, and loss on ignition for aggregate size fractions on a toposequence. Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 38, n. 15-16, p. 2005-2012, 2007. DOI:10.1080/00103620701548639. KERVEN, G. L.; MENZIES, N. W.; GEYER, M. D. Analytical methods and quality assurance, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 31, n. 11-14, p. 1935- 1939, 2000. DOI: 10.1080/00103620009370551. KIM, C.; JI, T.; EOM, J. B. Determination of organic compounds in water using ultraviolet LED. Measurement Science and Technology, v. 29, n. 4, 2018. DOI 10.1088/1361-6501/aaa364 KIRKBY, C. A.; RICHARDSON, A. E.; WADE, L. J.; BATTEN, G. D.; BLANCHARD, C.; KIRKEGAARD, J. A. Carbon-nutrient stoichiometry to increase soil carbon sequestration, Soil Biology and Biochemistry, v. 60, p. 77-86, 2013. KOMY, Z. R. Comparative study of Titrimetric and Gravimetric Methods for the determination of organic carbon in soils, International Journal of Environmental Analytical Chemistry, v. 60, n. 1, p. 41-47, 1995. DOI: 10.1080/03067319508027226. KOTAŚ, J.; STASICKA, S. Chromium occurrence in the environment and methods of its speciation, Environmental Pollution, v. 107, n. 3, p. 263-283, 2000. ISSN 0269-7491. Disponível em: https://doi.org/10.1016/S0269-7491(99)00168-2. Acesso em: 15 set. 2022. 81 KRUPIŃSKA, I. Impact of the Oxidant Type on the Efficiency of the Oxidation and Removal of Iron Compounds from Groundwater Containing Humic Substances, Molecules, v. 25, n. 15, p. 3380. 2020. DOI: 10.3390/molecules25153380. KUMAR, S.; GHOTEKAR, Y. S.; DADHWAL, V. K. C. Equivalent correction factor for soil organic carbon inventory by wet oxidation, dry combustion and loss on ignition methods in Himalayan region, Journal Earth System Science, v. 128, n. 62, 2019. Disponível em: https://doi-org.ez30.periodicos.capes.gov.br/10.1007/s12040-019-1086- 9. Acessado em: 17 ago. 2022. LÃ, O. R.; AZEVEDO, C. C.; BARRA, C. M.; NETTO-FERREIRA, J. B.; SOUSA, E. B.; ROCHA JR, J. G. A green and reliable titrimetric method for total organic carbon determination with potassium permanganate. Química Nova, v. 46, n. 2, p. 143-149, 2023. LAL, R. Soil carbon sequestration to mitigate climate change, Geoderma, v. 123, n. 1–2, p. 1-22, 2004a. ISSN 0016-7061. LAL, R. Soil Carbon Sequestration Impacts on Global Climate Change and Food Security. Science, v. 304, p. 1623-1627, 2004b. DOI: 10.1126/science.1097396. ŁOBIŃSKI, R.; MARCZENKO, Z.; Recent Advances in Ultraviolet-Visible Spectrophotometry, Critical Reviews in Analytical Chemistry, v. 23, n. 1-2, p. 55-111, 1992. MACHADO, P. L. O. A.; BERNARDI, A. C. C.; SANTOS, F. S. Métodos de preparo de amostras e de determinação de carbono em solos tropicais. Embrapa Solos-Circular Técnica (INFOTECA-E), 2003. MATEJOVIC, I. Determination of carbon, hydrogen, and nitrogen in soils by automated elemental analysis (dry combustion method), Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 24, n. 17-18, p. 2213-2222, 1993. DOI: 10.1080/00103629309368950. MATUS, F. J.; ESCUDEY, M.; FÖRSTER, J. E.; GUTIÉRREZ, M.; CHANG, A. C. Is the Walkley–Black Method Suitable for Organic Carbon Determination in Chilean Volcanic Soils? Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 40, n. 11-12, p. 1862–1872, 2009. DOI:10.1080/00103620902896746. McBEATH, S. T.; WILKINSON, D. P.; GRAHAM, N. J. D. Analytical quantification of aqueous permanganate: Direct and indirect spectrophotometric determination for water treatment processes, Chemosphere, v. 251, 126626, 2020. ISSN 0045-6535. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2020.126626. Acessado em: 10 jan. 2023. MEBIUS, L. J. A rapid method for the determination of organic carbon in soil, Analytica Chimica Acta, v. 22, p. 120-124, 1960. ISSN 0003-2670. Disponível em: https://doi.org/10.1016/S0003-2670(00)88254-9. Acessado em: 22 set. 2022. MENDONÇA, E. D. S.; MATOS, E. D. S. Matéria Orgânica do solo: métodos de análises. Viçosa: UFV, 2005. METLER TOLEDO. Análise Elementar de CHNSO – Preparação da Amostra. Disponível em: https://www.mt.com/br/pt/home/applications/Laboratory_weighing/chnso_elemental_an alysis.html. Acessado em: 16 jan. 2023. 82 MIKHAILOVA, E. A.; NOBLE, R. R. P.; POST, C.J. Comparison of Soil Organic Carbon Recovery by Walkley-Black and Dry Combustion Methods in the Russian Chernozem, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 34, n. 13-14, 1853- 1860, 2003. DOI:10.1081/css-120023220. MINASNY, B.; MCBRATNEY, A. B.; ALEXANDRE M. J. C.; WADOUX, E. N. A.; TENGKU, S. Precocious 19th century soil carbon science, Geoderma Regional, v. 22, 2020. ISSN 2352-0094. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.geodrs.2020.e00306. Acessado em: 30 mar. 2022. MINITAB 2020. Suporte ao Minitab 20. Disponível em: https://support.minitab.com/pt- br/minitab/20/ MIYAZAWA, M.; PAVAN, M. A.; OLIVEIRA, E. L.; IONASHIRO, M.; SILVA, A. K. Gravimetric Determination of Soil Organic Matter, Brazilian Archives of Biology and Technology, v. 43, p. 475-478, 2000. MIYAZAWA, M.; VIEIRA, K. M.; ARAUJO-JUNIOR, C. F.; Determinação espectrofotométrica do Cr3+ para estimar carbono orgânico do solo, Anais do XXXV Congresso Brasileiro de Ciência do Solo – Natal, 2015. MOREIRA, F. M. S.; SIQUEIRA, J. O. Microbiologia e Bioquímica do solo. 2 a ed. Atualização ampliada, Lavras: Editora UFLA, 2006, 729p. NAYAK, A. K.; RAHMAN, M. M.; NAIDU, R.; DHAL, B.; SWAIN, C. K.; NAYAK, A. D.; TRIPATHI, R.; SHAHID, M.; ISLAM, M. R.; PATHAK, H. Current and emerging methodologies for estimating carbon sequestration in agricultural soils: A review,Science of The Total Environment, v. 665, p. 890-912, 2019. NELSON, D. W.; SOMMERS, L. E. A rapid and accurate procedure for estimation of organic carbon in soils. Proceedings of the Indiana Academy of Science, v. 84, p. 456- 462, 1974. NELSON, D. W.; SOMMERS, L. E. Total Carbon, Organic Carbon, and Organic Matter ASA-SSSA, 677 S. Segoe Rd., Madison, WI 53711, USA. Methods of Soil Analysis, Part 2. Chemical and Microbiological Properties - Agronomy Monograph no 9 (2nd Edition). 1982. OLIVEIRA, F. C. C.; BACON, A.; FOX, T. R.; JOKELA, E. J.; KANE, M. B.; MARTIN, T. A.; NOORMETS, A.; ROSS, C. W.; VOGEL, J.; MARKEWITZ, D. A regional assessment of permanganate oxidizable carbon for potential use as a soil health indicator in managed pine plantations, Forest Ecology and Management, v. 521, p. 120423, 2022. ISSN 0378-1127. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.foreco.2022.120423. Acesso em: 12 nov. 2022. OSMAN, K. T. Soils: Principles, Properties and Management. 2013. DOI: 10.1007/978-94-007-5663-2. PAVIA, D. L.; LAMPMAN, G. M.; KRIZ, G. S.; VYVYAN, J. R. Introduction to Spectroscopy. Fifth Edition, Cengage Learning, USA, 2015. PEREIRA, M. G.; VALLADARES, G. S.; ANJOS, L. H. C.; BENITES, V. M.; ESPÍNDULA JR., A.; EBELING, A. G. Organic carbon determination in histosols and 83 soil horizons with high organic matter content from Brazil. Scientia Agricola, v. 63, n. 2, 2006. PRIBYL, D. W. A critical review of the conventional SOC to SOM conversion factor, Geoderma, v. 156, n. 3-4, p. 75-83, 2010. ISSN 0016-7061. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.geoderma.2010.02.003. Acessado em: 02 set. 2022. PUBCHEM - NATIONAL CENTER FOR BIOTECHNOLOGY INFORMATION. Compound Summary for CID 23976, Chromium. 2022a. Disponível em: https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/Chromium. Acessado em: 15 set. 2022. PUBCHEM - NATIONAL CENTER FOR BIOTECHNOLOGY INFORMATION. Compound Summary for CID 1118, Sulfuric acid. 2022b. Disponível em: https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/Sulfuric-acid. Acessado em: 15 set. 2022. QUIMESP, Ficha de informação de segurança de produto químico. 2021. Disponível em: https://www.quimesp.com.br/pdf/acido-sulfurico-98.pdf. Acessado em: 31 jan 2023. RAJENDRAPRASAD, N.; BASAVAIAH, K. Determination of olanzapine by spectrophotometry using permanganate. Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences [online], v. 45, n. 3, p. 539-550, 2009. ISSN 2175-9790. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S1984-82502009000300020. Acesso em: 05 out. 2022. RANGEL, O. J. P.; SILVA, C. A.; GUIMARÃES, P. T. G.; GUILHERME, L. R. G. Frações oxidáveis do carbono orgânico de latossolo cultivado com cafeeiro em diferentes espaçamentos de plantio. Ciência e agrotecnologia, v. 32, n. 2, p. 429-437. 2008. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S1413-70542008000200013. Acessado em: 07 jan 2023. RHEINHEIMER, D. S.; CAMPOS, B. C.; GIACOMINI, S. J.; CONCEIÇÃO, P. C.; BORTOLUZZI, E. C. Comparação de métodos de determinação de carbono orgânico total no solo. Revista Brasileira de Ciência do Solo, v. 32, p. 435-440, 2008. ROSELL, R. A.; GASPARONI, J. C.; GALANTINI, J. A. Assessment Methods for Soil Carbon, Chapter: 21, p. 311-322, In Soil Organic Matter Evaluation, Publisher: Lewis Publishers Editors: LAL, R.; KIMBLE, J. M.; FOLLET, R. F.; STEWART, B. A. 2001. RUMPEL, C.; KÖGEL-KNABNER, I. Deep soil organic matter - a key but poorly understood component of terrestrial C cycle, Plant and Soil, v. 338, n. 1-2, p.143–158, 2010. DOI:10.1007/s11104-010-0391-5. SANTI, C.; CERTINI, G.; D’ACQUI, L. P. Direct Determination of Organic Carbon by Dry Combustion in Soils with Carbonates, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 37, n. 1-2, p. 155–162. 2006. DOI:10.1080/00103620500403531. SCHOLLENBERGER, C. J. A rapid approximate method for determining soil organic matter Soil Science, v. 24, p. 65-68, 1927. SCHULTE, E. E.; HOPKINS, B. G. Estimation of Soil Organic Matter by Weight Loss-On-Ignition. In Soil Organic Matter: Analysis and Interpretation, MAGDOFF, F. R.; TABATABAI, M. A.; HANLON, E. A. eds. 1996. Disponível em: https://doi.org/10.2136/sssaspecpub46.c3. Acessado em: 31 ago. 2022. 84 SCHNITZER, M. Soil organic matter - the next 75 years. Soil Science, v. 151, n. 1, p. 41–58, 1991. DOI:10.1097/00010694-199101000-00008. SCHUMACHER, B. Methods for the determination of total organic carbon (TOC) in soils and sediments: ecological risk assessment support center. Method NCEA-C-1282: United States Environmental Protection Agency, p. 1-23, 2002. SCIENCEDIRECT, Base de Dados. Disponível em: https://www.sciencedirect.com/. Acessado em: 01 dez 2022. SHAMRIKOVA, E. V.; KONDRATENOK, B. M.; TUMANOVA, E. A.; VANCHIKOVA, E. V.; LAPTEVA, E. M.; ZONOVA, T. V.; LU-LYAN-MIN, E. I.; DAVYDOVA, A. P.; LIBOHOVA, Z.; SUVANNANG, N. Transferability between soil organic matter measurement methods for database harmonization, Geoderma, v. 412, 115547, 2022. ISSN 0016-7061. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.geoderma.2021.115547. Acessado em: 05 dez. 2022. SIGMA-ALDRICH. Ficha de informação de segurança de produto químico. 2021. Disponível em: https://www.sigmaaldrich.com/BR/pt/sds/mm/sx1248. Acessado em: 10 jan. 2023. SILVA, L. M.; RODRIGUES, M. J. M.; TAVARES, O. C. H.; SANTOS, O. A. Q.; WADT, P. G. S.; PEREIRA, M. G. Determinação dos teores de carbono orgânico em solos do Acre, com diferentes procedimentos analíticos. Porto Velho: Embrapa Rondônia, 2021. 13p. SILVEIRA, M. V.; LOPES, T. J.; ROSA, G. R. N‐arilação do imidazol via CuI: um tutorial para otimização de um sistema catalítico através do planejamento experimental, Educación Química, v. 28, n. 1, p. 44-50, 2017. SLEUTEL, S; NEVE, S; SINGIER, B; HOFMAN, G. Quantification of Organic Carbon in Soils: A Comparison of Methodologies and Assessment of the Carbon Content of Organic Matter, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 38, n. 19-20, p. 2647-2657, 2007. DOI: 10.1080/00103620701662877. SKOOG, D. A.; WEST, D. M.; HOLLER, F. J.; CROUCH, S. R. Fundamentos de Química Analítica, Tradução da 8a Edição norte-americana, Editora Thomson, São Paulo-SP, 2006. SOIL SURVEY LABORATORY, Methods Manual. Soil Survey Investigations Report No. 42. U.S. Department of Agriculture, Washington, DC. 1992. SOUZA, D. M.; MORAIS, P. A. O.; MATSUSHIGE. I.; ROSA, L. A. Development of Alternative Methods for Determining Soil Organic Matter. Revista Brasileira de Ciência do Solo, 40:e0150150, 2016. TABATABAI, M. A. Soil Organic Matter Testing: An Com ponto ou sem ponto. In Soil Organic Matter: Analysis and Interpretation (eds F.R. MAGDOFF, M.A. TABATABAI AND E.A. HANLON). 1996. Disponível em: https://doi.org/10.2136/sssaspecpub46.c1. Acessado em: 17 ago. 2022. TEDESCO, M. J.; GIANELLO, C.; BISSANI, C. A.; BOHNEN, H.; VOLKWEISS, S. J Análises de solo, plantas e outros materiais (Boletim Técnico, 5). 2.ed. Porto Alegre, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, 1995. 174p. 85 TEIXEIRA, D. R. C. Planejamento fatorial e estudos para escalonamento de um novo agonista parcial de PPARγ, LPSF GQ-16. Dissertação (Mestrado em Inovação Terapeutica) - Centro De Biociências, Universidade Federal De Pernambuco, Recife, PE. 2018. 107p. VETTORI, L. Métodos de análise de solo. Rio de Janeiro: Ministério da Agricultura- EPFS, (Brasil. Ministério da Agricultura-EPFS. Boletim técnico, 7), 1969. 24p. VICENTINI, F. C.; FIGUEIREDO-FILHO, L. C. S.; JANEGITZ, B. C.; SANTIAGO, A.; PEREIRA-FILHO, E. R.; FATIBELLO-FILHO, O. Planejamento fatorial e superfície de resposta: otimização de um método voltamétrico para a determinação de Ag(I) empregando um eletrodo de pasta de nanotubos de carbono. Química Nova, v. 34, n. 5, p. 825-830. 2011 VICKERY, P. J.; LUTTON, J. J.; BERNETT, R. D. A simple procedure for colorimetric determination of organic carbon in soil, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 26, n. 5-6, p. 899-911, 1995. DOI: 10.1080/00103629509369342. VIEIRA, C. F. Avaliação da espectrometria no infravermelho próximo na determinação de C e N de solos da região Sul do Espírito Santo. Dissertação (Mestrado em Agroquímica) – Centro de Ciências Exatas, Naturais e da Saúde - CCENS, Universidade Federal do Espírito Santo, Alegre, ES. 2019. 60p. VITTI, C.; STELLACCI, A. M.; LEOGRANDE, R; MASTRANGELO, M.; CAZZATO, E.; VENTRELLA, D. Assessment of organic carbon in soils: a comparison between the Springer–Klee wet digestion and the dry combustion methods in Mediterranean soils (Southern Italy), CATENA, v. 137, p. 113-119, 2016. ISSN 0341-8162. Disponível em: https://doi.org/10.1016/j.catena.2015.09.001. Acessado em: 09 set. 2022. WALINGA, I.; KITHOME, M.; NOVOZAMSKY, I.; HOUBA, V. J. G.; van der Lee, J. J. Spectrophotometric determination of organic carbon in soil, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 23, n. 15-16, p. 1935-1944, 1992. DOI: 10.1080/00103629209368715 WALKLEY, A. A critical examination of a rapid method for determining organic carbon m soils: Effect of variations in digestion conditions and of inorganic soil constituents. Soil Science, v. 63, p. 251-263, 1947. WALKLEY, A.; BLACK, I. A. An examination of the Degtjareff method for determining soil organic matter, and a proposed modification of the chromic acid titration method. Soil Science, v. 37, n. 1, p. 29-38, 1934 WANG, Q.; LI, Y.; WANG, Y. Optimizing the weight loss-on-ignition methodology to quantify organic and carbonate carbon of sediments from diverse sources. Environmental Monitoring and Assessment, v. 174, n. 1-4, p. 241-57, 2011. DOI: 10.1007/s10661-010- 1454-z. WESTMAN, C. J.; HYTNEN, J.; WALL, A. Loss‐on‐Ignition in the Determination of Pools of Organic Carbon in Soils of Forests and Afforested Arable Fields, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 37, n. 7-8, p. 1059-1075, 2006. DOI: 10.1080/00103620600586292. 86 WILBUR S.; ABADIN H.; FAY M.; YU, D.; TENCZA, B.; INGERMAN, L.; KLOTZBACH, J.; JAMES, S. Toxicological Profile for Chromium. Atlanta (GA): Agency for Toxic Substances and Disease Registry (US); 2012 Sep. PEER REVIEW.2012. Disponível em: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK158849. Acessado em 21 jan 2023. YEOMANS, J. C.; BREMNER, J. M. A rapid and precise method for routine determination of organic carbon in soil, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 19, n. 13, p. 1467-1476, 1988. YEOMANS, J. C.; BREMNER, J. M. Carbon and nitrogen analysis of soils by automated combustion techniques, Communications in Soil Science and Plant Analysis, v. 22, n. 9- 10, p. 843-850, 1991. DOI: 10.1080/00103629109368458. ZHAO, H.; WANG, L.; ZHANG, H.; WU, X.; ZHAO, B.; HAN, F. Effect of potassium permanganate dosing position on the performance of coagulation/ultrafiltration combined process, Chinese Journal of Chemical Engineering, v. 26, n. 1, p. 89-95, 2018. ZIMMERMAN, C. F.; KEEFE, C. W.; BASHE, J. Method 440.0 Determination of Carbon and Nitrogen in Sediments and Particulates of Estuarine/Coastal Waters Using Elemental Analysis. U.S. Environmental Protection Agency, Washington, DC, EPA/600/R-15/009, 1997.pt_BR
dc.subject.cnpqQuímicapt_BR
dc.subject.cnpqQuímicapt_BR
Appears in Collections:Doutorado em Química

Se for cadastrado no RIMA, poderá receber informações por email.
Se ainda não tem uma conta, cadastre-se aqui!

Files in This Item:
File Description SizeFormat 
2023 - Érica Barbosa de Sousa.Pdf2.45 MBAdobe PDFThumbnail
View/Open


Items in DSpace are protected by copyright, with all rights reserved, unless otherwise indicated.